FastGene UF Concentrators

Ultrafiltrationsvorrichtungen zur effizienten Konzentration und Reinigung von Biomolekülen durch Zentrifugalkraft

    • 3 verschiedene Röhrchengrößen: 0,5 mL, 4 mL, 15 mL
    • 3 verschiedene Porengrößen (MWCO): 10 kDa, 30 kDAa 100 kDa
    • Sehr hohe Probenrückgewinnungsrate (>90 %)
    • Minimale Protein- und Nukleinsäureadsorption
    • Vertikales Design für schnelle, verstopfungsfreie Filtration/Konzentration
    • Extrem geringes Totvolumen für maximale Ausbeute
    • Kompatibel mit Standard-Zentrifugenrotoren
    • Sichere, zuverlässige Materialien

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Art. Nr. n. a.

Details

  • Die FastGene® UF-Konzentratoren sind für die schnelle Konzentration, Reinigung und den Pufferaustausch von Proteinen, Nukleinsäuren und anderen Biomolekülen konzipiert.
  • Sie sind in Röhrchen mit einer Probengröße von 0,5 mL, 4 mL und 15 mL erhältlich (FastGene® UF Concentrator 0,5 mL, FastGene® UF Concentrator 4 mL, FastGene® UF Concentrator 15 mL) und mit mehreren Molekulargewichtsgrenzen (MWCO: 10 kDa, 30 kDa, 100 kDa) ausgestattet. Sie gewährleisten eine hervorragende Probenrückgewinnung bei minimaler Bindung.
  • Das vertikale Doppelmembran-Design verhindert Verstopfungen und ermöglicht schnelle Durchflussraten, während das Anti-Dry-Lock-System empfindliche Proben vor übermäßiger Zentrifugation schützt. Mit ihren gering bindenden PES-Membranen bieten die FastGene® UF Cocetrators eine hervorragende Biokompatibilität und Reproduzierbarkeit für Forschungsanwendungen.
Applikationen
  • Protein- und Nukleinsäurekonzentration oder Entsalzung
  • Pufferaustausch
  • Virus- und Exosomenkonzentration
  • Entfernung von Verunreinigungen aus Zelllysaten
  • Klärung von Proben vor der Chromatographie oder HPLC

Produktübersicht

Die FastGene® UF Concentrators sind in drei verschiedenen Tubegrößen erhältlich: 0,5 mL, 4 mL und 15 mL.
FastGene® UF Concentrators 0.5 mL
Art. Nr. Volumen MWCO Deckelfarbe   Packungsgröße (Stückzahl/Box)
FG-UFC05-10KD 0.5 mL 10 kDa Transparent 96
FG-UFC05-30KD 0.5 mL 30 kDa Transparent 96
FG-UFC05-100KD 0.5 mL 100 kDa Transparent 96

 

FastGene® UF Concentrators 4 mL
Art. Nr. Volumen MWCO Deckelfarbe   Packungsgröße (Stückzahl/Box)
FG-UFC4-10KD 4 mL 10 kDa Gelb 40
FG-UFC4-30KD 4 mL 30 kDa Grün 40
FG-UFC4-100KD 4 mL 100 kDa Pink 40
FastGene® UF Concentrators 15 mL
Art. Nr. Volumen MWCO Deckelfarbe   Packungsgröße (Stückzahl/Box)
FG-UFC15-10KD 15 mL 10 kDa Gelb 15
FG-UFC15-30KD 15 mL 30 kDa Grün 15
FG-UFC15-100KD 15 mL 100 kDa Pink 15
Selection Guide

Die Wahl des richtigen MWCO (Molecular Weight Cut-Off) ist für eine optimale Rückgewinnung und Konzentrationseffizienz unerlässlich.
Verwenden Sie Filter mit kleinerem MWCO für kleinere Proteine und Filter mit größerem MWCO für Biomoleküle mit hohem Molekulargewicht wie Antikörper, Viren oder Exosomen.

MWCO Filtermembran Empfohlener Protein-Molekulargewichtsbereich Zentrifugationszeit
0,5 mL Tubes		 Zentrifugationszeit
4 mL Tubes		 Zentrifugationszeit
15 mL Tubes
10 kDa ~20–60 kDa 10–15 min 10–30 min 10–30 min
30 kDa ~60–120 kDa < 10 min 15–20 min 15–20 min
100 kDa ≥ 150 kDa (große Proteine, Antikörper, Viren, Exosomen) < 10 min 20–30 min 20–30 min

Spezifikationen

Parameter
0,5 mL UF Concentrators
4 mL UF Concentrators
15 mL UF Concentrators
Größe des Zentrifugenröhrchens  1.5/2 mL konische Röhrchen 15 mL konische Röhrchen 50 mL konische Röhrchen
Membranmaterial PES (Polyethersulfon) PES (Polyethersulfon) PES (Polyethersulfon)
Tube and cap material PP (Polypropylen) PP (Polypropylen) PP (Polypropylen)
Material von Röhrchen und Verschlusskappe PC (Polycarbonat)
K-Harz (Styrol-Butadien-Copolymer)		 PC (Polycarbonat)
K-Harz (Styrol-Butadien-Copolymer)		 PC (Polycarbonat)
K-Harz (Styrol-Butadien-Copolymer)
Totvolumen ≤5 µL ≤20 µL ≤30 µL
Minimales Volumen 10–20 µL 50–100 µL ~300 µL
Max. RCF 14,000 × g 6,000 × g
(3,000 × g für 100 kDa)		 5,000 × g
(3,000 × g für 100 kDa)
Betriebstemperatur 0–40 °C 0–40 °C 0–40 °C
pH Bereich 1–14 1–14 1–14
Sterilisation Nicht autoklavierbar. Sterilisieren Sie durch Spülen mit 70 %igem Ethanol durch den
UF-Konzentrator.		 Nicht autoklavierbar. Sterilisieren Sie durch Spülen mit 70 %igem Ethanol durch den
UF-Konzentrator.		 Nicht autoklavierbar. Sterilisieren Sie durch Spülen mit 70 %igem Ethanol durch den
UF-Konzentrator.

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FAQ

Allgemein

Wozu werden FastGene UF-Konzentratoren verwendet?
  • Sie werden zur Konzentration, Entsalzung und zum Pufferaustausch von Biomolekülen wie Proteinen, Nukleinsäuren und Viren verwendet.
  • Sie können auch zur Klärung von Proben oder zur Entfernung kleiner Verunreinigungen eingesetzt werden.
Welche Größen und MWCOs sind verfügbar?

FastGene® UF Concentrators sind in drei Größen erhältlich – 0,5 mL, 4 mL und 15 mL – jeweils mit drei Molekulargewichtsgrenzen (MWCO): 10 kDa, 30 kDa und 100 kDa.

Welches Membranmaterial wird verwendet?

Alle FastGene® UF Concentrators verwenden eine PES-Membran (Polyethersulfon) mit geringer Bindungsneigung, die sich ideal für Proteine und Nukleinsäuren eignet.

Für welchen pH-Bereich sind die Konzentratoren geeignet?

Die PES-Membran ist mit einem pH-Wert von 1 bis 14 kompatibel und deckt damit die meisten biologischen und chemischen Anwendungen ab.

Kann ich die Konzentratoren wiederverwenden?

Alle FastGene® UF Concentrators sind Einwegprodukte und nicht steril. Eine Wiederverwendung kann die Leistung beeinträchtigen und das Risiko einer Kontamination erhöhen. Eine Wiederverwendung wird nicht empfohlen.

Können die Konzentratoren sterilisiert werden?

Nicht autoklavieren. Zur Reinigung oder begrenzten Sterilisation können Sie das Produkt vor Gebrauch 30 Minuten lang mit 70 %igem Ethanol abspülen. Lassen Sie das Ethanol immer vollständig verdunsten.

Sind die Konzentratoren RNase- oder Endotoxin-frei?

Sie sind nicht als RNase-frei oder endotoxinfrei zertifiziert. Bei Bedarf 2 Stunden lang mit 0,1 %iger DEPC-Lösung bei 37 °C spülen und anschließend gründlich mit ultrareinem Wasser waschen.

Sind die Konzentratoren chemisch kompatibel mit organischen Lösungsmitteln oder starken Reagenzien?

Die Konzentratoren sind für wässrige und biologische Lösungen vorgesehen.
Überprüfen Sie die Tabelle zur chemischen Verträglichkeit (siehe Benutzerhandbuch oder Liste unten), bevor Sie Säuren, Basen oder Lösungsmittel verwenden.

Kategorie Chemikalie / Reagenz Max. Konzentration   Kategorie Chemikalie / Reagenz Max. Konzentration
Säure Sulfaminsäure ≤3 % Organische Lösungsmittel Benzol Nicht empfohlen
Ameisensäure ≤5 % Aceton Nicht empfohlen
Essigsäure ≤25 % Acetonitril ≤10 %
Salzsäure ≤1 M Toluol Nicht empfohlen
Schwefelsäure ≤3 % Formaldehyd ≤5 %
Salpetersäure ≤10 % DMSO ≤5 %
Milchsäure ≤5 % Ethylacetat Nicht empfohlen
Phosphorsäure ≤30 % Pyridin Nicht empfohlen
Trifluoressigsäure ≤10 % Chloroform Nicht empfohlen
Trichloressigsäure ≤10 % Tetrachlorkohlenstoff Nicht empfohlen
Base Natriumhydroxid
(4 mL / 15 mL Tubes)		 ≤0.5 M Tetrahydrofuran Nicht empfohlen
Natriumhydroxid
(0,5 mL Tubes)		 ≤0.1 M Andere Reagenzien Phenol < 1 %
Ammoniumhydroxid ≤10 % Glycerol ≤70 %
Alkohol Methanol ≤60 % DTT ≤0.1 M
  Ethanol ≤70 % DEPC (Diethylpyrocarbonat) ≤0.2 %
  Isopropanol ≤70 % PEG (Polyethylenglykol) ≤10 %
  n-Butanol ≤70 % Phosphatpuffer (pH 8,2) ≤1 M
  Ammoniumsulfat Saturated
  Imidazol ≤500 mM
  Urea ≤8 M
  β-Mercaptoethanol ≤0.01 M
  Tris-Puffer (pH 8.2) ≤1 M
  Natriumcarbonat ≤20 %
  Guanidinhydrochlorid ≤6 M

Verwendung

Kann ich die Konzentratoren bei 4 °C verwenden?

Ja. Eine Zentrifugation bei 4 °C ist möglich, jedoch steigt die Viskosität bei niedrigen Temperaturen, sodass die Zentrifugationszeit um etwa das 1,5-fache der ursprünglichen Dauer verlängert werden muss.

Wie entnehme ich die konzentrierte Probe?
  • 0,5 mL Tubes: Verwenden Sie die Reverse-Spin-Methode – drehen Sie den Filter in ein sauberes Sammelröhrchen um und zentrifugieren Sie bei 1.000 × g für 1–2 Minuten.
  • 4 mL- und 15 mL Tubes: Sammeln Sie das Konzentrat direkt mit einer Pipette.
Wie kann ich die Proteinausbeute verbessern und Verluste vermeiden?
  • Wählen Sie eine MWCO, die etwa einem Drittel des Molekulargewichts des Zielproteins entspricht.
  • Vermeiden Sie übermäßige Zentrifugalkraft oder lange Schleuderzeiten.
  • Wenn die Probe viskos ist oder zum Verkleben neigt, blockieren Sie die Membran über Nacht mit 10 % Glycerin und spülen Sie sie vor der Verwendung ab.
Können diese Geräte Reinigungsmittel oder Endotoxine entfernen?
  • Waschmittel: Nur teilweise; die Effizienz sinkt oberhalb des CMC-Wertes.
  • Endotoxine: Nein, da Endotoxine oft >10 kDa groß sind und durch Ultrafiltration nicht wirksam entfernt werden können.
Können FastGene UF-Konzentratoren zur Konzentration von Viren oder Nanopartikeln verwendet werden?

Ja.

  • Lentivirus: Verwenden Sie 100 kDa MWCO.
  • Adenovirus: Verwenden Sie 50 kDa MWCO.

Sie eignen sich auch für die Konzentration von Nanopartikeln und Exosomen (empfohlen 50–100 kDa).

Welche Zentrifugeneinstellungen soll ich verwenden?
  • 0,5 mL:  Bis 14,000 × g
  • 4 mL: Bis 6,000 × g (3,000 × g for 100 kDa)
  • 15 mL: Bis 5,000 × g (3,000 × g for 100 kDa)

Verwenden Sie Schwenkbecher oder Rotoren mit festem Winkel, die mit konischen Standard-Tubes kompatibel sind. Tarieren Sie Ihre Proben immer aus.

Trocknen die Proben während der Zentrifugation aus?

Nein. Die FastGene® UF-Konzentratoren verfügen über ein Totvolumen-Design, das ein vollständiges Austrocknen verhindert und Ihre Probe schützt.

Fehlerbehebung

Mein Protein hat sich während der Konzentration ausgefällt – was soll ich tun?

Bei zu schneller oder zu starker Konzentration kann es zu Ausfällungen kommen. Versuchen Sie Folgendes:

  • Reduzierung der Zentrifugalkraft (auf 30–50 % der Empfehlung).
  • Umstellung auf einen größeren MWCO (z. B. 30 kDa statt 10 kDa).
  • Vorsichtiges Mischen der Probe zwischen den Zentrifugationsvorgängen.
Warum fehlt mein Zielprotein nach der Zentrifugation?

Mögliche Ursachen:

  • Die gewählte MWCO ist zu groß (Ziel überschritten).
  • Zentrifugalkraft zu hoch oder Rotor nicht kalibriert.
  • Protein während des Schleuderns ausgefällt. Filtrat und Konzentrat überprüfen; wenn sich Protein im Filtrat befindet, eine kleinere MWCO verwenden.

Dokumente

Manual

Manual | FastGene UF Concentrators | FG-UCF

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