Concentrateurs UF FastGene

Nouveau | Dispositifs d'ultrafiltration pour la concentration et la purification efficaces de biomolécules par la force centrifuge

  • 3 tailles de tubes différentes : 0,5 mL, 4 mL, 15 mL
  • 3 tailles de pores différentes (MWCO) : 10 kDa, 30 kDa, 100 kDa
  • Taux de récupération des échantillons très élevé (>90 %)
  • Adsorption minimale des protéines et des acides nucléiques
  • Conception verticale pour une filtration/concentration rapide et sans colmatage
  • Volume mort ultra-faible pour un rendement maximal
  • Compatible avec les rotors de centrifugeuse standard
  • Matériaux sûrs et fiables

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Numéro de catalogue ND

Détails

  • Les concentrateurs UF FastGene® sont conçus pour la concentration, la purification et l’échange de tampons rapides des protéines, des acides nucléiques et d’autres biomolécules.
  • Ils sont disponibles avec des tubes de 0,5 ml, 4 ml et 15 ml (concentrateurs FastGene® UF 0,5 mL, concentrateurs UF FastGene® 4 mL concentrateurs UF FastGene® 15 mL), avec plusieurs seuils de coupure moléculaire (MWCO : 10 kDa, 30 kDa, 100 kDa), et garantissent une excellente récupération des échantillons avec une liaison minimale.
  • La conception verticale à double membrane empêche le colmatage et permet des débits élevés, tandis que le système anti-blocage à sec protège les échantillons sensibles contre une centrifugation excessive. Grâce à leurs membranes PES à faible liaison, les concentrateurs UF FastGene® offrent une excellente biocompatibilité et une grande reproductibilité pour les applications de recherche.
Applications
  • Concentration ou dessalement de protéines et d’acides nucléiques
  • Échange de tampons
  • Concentration de virus et d’exosomes
  • Élimination des contaminants des lysats cellulaires
  • Clarification des échantillons avant chromatographie ou HPLC

Produits et guide d'achat

Les concentrateurs UF FastGene® sont disponibles avec des tubes pouvant contenir des échantillons de 0,5 mL, 4 mL et 15 mL.
Concentrators UF FastGene® 0.5 mL
Référence Volume MWCO Couleur   Contenu du paquet
(pièces par boîte)
FG-UFC05-10KD 0.5 mL 10 kDa Transparent 96
FG-UFC05-30KD 0.5 mL 30 kDa Transparent 96
FG-UFC05-100KD 0.5 mL 100 kDa Transparent 96

 

Concentrators UF FastGene® 4 mL
Référence Volume MWCO Couleur   Contenu du paquet
(pièces par boîte)
FG-UFC4-10KD 4 mL 10 kDa Jaune 40
FG-UFC4-30KD 4 mL 30 kDa Vert 40
FG-UFC4-100KD 4 mL 100 kDa Rose 40
Concentrators UF FastGene® 15 mL
Référence Volume MWCO Couleur   Contenu du paquet
(pièces par boîte)
FG-UFC15-10KD 15 mL 10 kDa Jaune 15
FG-UFC15-30KD 15 mL 30 kDa Vert 15
FG-UFC15-100KD 15 mL 100 kDa Rose 15
Guide de sélection

Le choix d’un MWCO (seuil de coupure moléculaire) adapté est essentiel pour obtenir une efficacité optimale en termes de récupération et de concentration.
Utilisez des filtres à MWCO plus faible pour les protéines de petite taille et des filtres à MWCO plus élevé pour les biomolécules de haut poids moléculaire telles que les anticorps, les virus ou les exosomes.

Filtre MWCO Membrane Protéines recommandées plage de poids moléculaire Durée de centrifugation
Tubes de 0,5 mL		 Durée de centrifugation
Tubes de 4 mL		 Durée de centrifugation
Tubes de15 mL
10 kDa ~20–60 kDa 10–15 min 10–30 min 10–30 min
30 kDa ~60–120 kDa < 10 min 15–20 min 15–20 min
100 kDa ≥ 150 kDa (grandes protéines, anticorps, virus, exosomes) < 10 min 20–30 min 20–30 min

Spécifications

Paramètre
Concentrators UF 0.5 mL
Concentrators UF 4 mL
Concentrators UF 15 mL
Calibre des tubes à centrifuger 1.5/2 mL tubes coniques 15 mL tubes coniques 50 mL tubes coniques
Matériau de la membrane PES (polyéthersulfone) PES (polyéthersulfone) PES (polyéthersulfone)
Matériau du tube et du bouchon PP (polypropylène) PP (polypropylène) PP (polypropylène)
Matériau du dispositif de filtration PC (polycarbonate)
K-résine (copolymère styrène-butadiène)		 PC (polycarbonate)
K-résine (copolymère styrène-butadiène)		 PC (polycarbonate)
K-résine (copolymère styrène-butadiène)
Volume mort ≤5 µL ≤20 µL ≤30 µL
Volume de verrouillage (min.) 10–20 µL 50–100 µL ~300 µL
RCF max. 14,000 × g 6,000 × g
(3,000 × g pour 100 kDa)		 5,000 × g
(3,000 × g pour 100 kDa)
Température de fonctionnement 0–40 °C 0–40 °C 0–40 °C
plage de pH 1–14 1–14 1–14
Stérilisation Non autoclavable. Stériliser en rinçant à l’éthanol à 70 % à travers le concentrateur UF Non autoclavable. Stériliser en rinçant à l’éthanol à 70 % à travers le concentrateur UF Non autoclavable. Stériliser en rinçant à l’éthanol à 70 % à travers le concentrateur UF

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FAQ

Généralités

À quoi servent les concentrateurs UF FastGene ?

Ils sont utilisés pour la concentration, le dessalage et l’échange de tampon de biomolécules telles que les protéines, les acides nucléiques et les virus. Ils peuvent également servir à clarifier des échantillons ou à éliminer de petits contaminants.

Quelles tailles et quels MWCO sont disponibles ?

Les concentrateurs UF FastGene® sont proposés en trois tailles – 0,5 ml, 4 ml et 15 ml – chacune avec trois seuils de coupure moléculaire (MWCO) : 10 kDa, 30 kDa et 100 kDa.

Quel matériau de membrane est utilisé ?

Tous les concentrateurs UF FastGene® utilisent une membrane PES (polyéthersulfone) à faible liaison, idéale pour les protéines et les acides nucléiques.

Quelle plage de pH peuvent-ils supporter ?

La membrane PES est compatible avec un pH compris entre 1 et 14, couvrant ainsi la plupart des applications biologiques et chimiques.

Puis-je réutiliser les concentrateurs ?

Tous les concentrateurs UF FastGene® sont des dispositifs à usage unique et non stériles. La réutilisation peut réduire les performances et présenter un risque de contamination. La réutilisation n’est pas recommandée.

Peuvent-ils être stérilisés ?

Ne pas passer à l’autoclave. Pour le nettoyage ou une stérilisation limitée, vous pouvez rincer à l’éthanol à 70 % pendant 30 minutes avant utilisation. Laissez toujours l’éthanol s’évaporer complètement.

Les concentrateurs sont-ils exempts de RNase ou d’endotoxines ?

Ils ne sont pas certifiés exempts de RNase ou d’endotoxines. Si nécessaire, rincez-les avec une solution de DEPC à 0,1 % à 37 °C pendant 2 h, puis lavez-les soigneusement à l’eau ultra-pure.

Ces dispositifs sont-ils chimiquement compatibles avec les solvants organiques ou les réactifs puissants ?

Ils sont destinés à être utilisés avec des solutions aqueuses et biologiques.

Vérifiez le tableau de compatibilité chimique (voir le manuel d’utilisation ou la liste ci-dessous) avant d’utiliser des acides, des bases ou des solvants.

Catégorie Produit chimique / Réactif Concentration maximale   Catégorie Produit chimique / Réactif Concentration maximale
Acide Acide sulfamique ≤3 % Solvant organique Benzène Non recommandé
Acide formique ≤5 % Acétone Non recommandé
Acide acétique ≤25 % Acétonitrile ≤10 %
Acide chlorhydrique ≤1 M Toluène Non recommandé
Acide sulfurique ≤3 % Formaldéhyde ≤5 %
Acide nitrique ≤10 % DMSO ≤5 %
Acide lactique ≤5 % Acétate d’éthyle Non recommandé
Acide phosphorique ≤30 % Pyridine Non recommandé
Acide trifluoroacétique ≤10 % Chloroforme Non recommandé
Acide trichloroacétique ≤10 % Tétrachlorure de carbone Non recommandé
Base Hydroxyde de sodium
(tubes de 4 mL / 15 mL)		 ≤0.5 M Tétrahydrofurane Non recommandé
Hydroxyde de sodium
(tubes de 0.5 mL)		 ≤0.1 M Autre réactif Phénol < 1 %
Hydroxyde d’ammonium ≤10 % Glycérol ≤70 %
Alcool Méthanol ≤60 % DTT ≤0.1 M
  Éthanol ≤70 % DEPC (pyrocarbonate de diéthyle) ≤0.2 %
  Isopropanol ≤70 % PEG (polyéthylène glycol) ≤10 %
  n-Butanol ≤70 % Tampon phosphate (pH 8,2) ≤1 M
  Sulfate d’ammonium Saturé
  Imidazole ≤500 mM
  Urée ≤8 M
  β-Mercaptoéthanol ≤0.01 M
  Tampon Tris (pH 8,2) ≤1 M
  Carbonate de sodium ≤20 %
  Chlorhydrate de guanidine ≤6 M

Utilisation

Puis-je les utiliser à 4 °C ?

Oui. La centrifugation à 4 °C est possible, mais la viscosité augmente à basse température ; il convient donc de prolonger la durée de centrifugation d’environ 1,5 fois la durée initiale.

Comment récupérer l’échantillon concentré ?
  • Tubes de 0,5 mL : utilisez la méthode de centrifugation inversée – retournez le filtre dans un tube de collecte propre et centrifugez à 1 000 × g pendant 1 à 2 minutes.
  • Tubes de 4 mL et 15 mL : récupérez le concentré directement à l’aide d’une pipette.
Comment puis-je améliorer la récupération des protéines ou éviter toute perte ?
  • Choisissez un MWCO correspondant à environ un tiers du poids moléculaire de la protéine cible.
  • Évitez une force centrifuge excessive ou des temps de centrifugation trop longs.
  • Si l’échantillon est visqueux ou a tendance à coller, pré-bloquez la membrane avec 10 % de glycérol pendant une nuit et rincez-la avant utilisation.
Ces dispositifs peuvent-ils éliminer les détergents ou les endotoxines ?
  • Détergents : Seulement partiellement ; l’efficacité diminue au-delà de la valeur CMC.
  • Endotoxines : Non, car les endotoxines ont souvent une taille supérieure à 10 kDa et ne sont pas éliminées efficacement par ultrafiltration.
Les concentrateurs FastGene UF peuvent-ils être utilisés pour la concentration de virus ou de nanoparticules ?

Oui.

  • Lentivirus : utilisez un MWCO de 100 kDa.
  • Adénovirus : utilisez un MWCO de 50 kDa.

Ils conviennent également à la concentration de nanoparticules et d’exosomes (recommandé : 50–100 kDa).

Quels paramètres de centrifugation dois-je utiliser ?
  • 0,5 mL : jusqu’à 14 000 × g
  • 4 mL : jusqu’à 6 000 × g (3 000 × g pour 100 kDa)
  • 15 mL : jusqu’à 5 000 × g (3 000 × g pour 100 kDa)

Utilisez des rotors à godets oscillants ou à angle fixe compatibles avec les tubes coniques standard. Équilibrez toujours vos échantillons.

Les échantillons s’assèchent-ils pendant la centrifugation ?

Non. Les concentrateurs UF FastGene® sont dotés d’une conception à volume mort qui empêche le séchage complet et protège votre échantillon.

Dépannage

Ma protéine s’est précipitée pendant la concentration — que dois-je faire ?

Une précipitation peut se produire si la concentration est trop rapide ou trop poussée. Essayez :

  • De réduire la force centrifuge (à 30–50 % de la valeur recommandée).
  • De passer à un MWCO plus élevé (par exemple, 30 kDa au lieu de 10 kDa).
  • Mélanger délicatement l’échantillon entre les centrifugations.
Pourquoi ma protéine cible a-t-elle disparu après la centrifugation ?

Causes possibles :

  • Le MWCO choisi est trop élevé (la cible a traversé le filtre).
  • Force centrifuge trop élevée ou rotor non calibré.
  • La protéine s’est précipitée pendant la centrifugation. Vérifiez le filtrat et le concentré ; si la protéine se trouve dans le filtrat, utilisez un MWCO plus faible

Documents

Manuel

Manual | FastGene UF Concentrators | FG-UCF

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